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evoldir · 6 years

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Course: UK.3PythonCourses.Jun10-28

Dear Brian, can you please post the following to the courses and workshops page of evoldir, thanks in advance, Oliver 3 different Python courses for Biologists scheduled for June in Scotland Introduction to Python for Biologists (IPYB06) 10 June 2019 - 14 June 2019 http://bit.ly/2To698J Advanced Python for Biologists (APYB03) 17 June 2019 - 21 June 2019 http://bit.ly/2Yc1ydB Genomic data Visualisation and Manipulation using Python (DVMP02) 24 June 2019 - 28 June 2019 http://bit.ly/2To6acN Email [email protected] Check out our sister sites, http://bit.ly/2BpXxpa (Ecology and Life Sciences) http://bit.ly/2qdTVVO (Bioinformatics and data science) http://bit.ly/2DwqNvO (Behaviour and cognition) 1. March 25th V 29th 2019 LANDSCAPE GENETIC DATA ANALYSIS USING R (LNDG03) Glasgow, Scotland, Prof. Rodney Dyer http://bit.ly/2Kvo0ew 2. April 1st V 5th 2019 INTRODUCTION TO STATISTICAL MODELLING FOR PSYCHOLOGISTS USING R (IPSY01) Glasgow, Scotland, Dr. Dale Barr, Dr Luc Bussierre http://bit.ly/2IQGOz8 3. April 1st V 5th 2019 INDIVIDUAL BASED MODELS FOR ECOLOGSITS (IBME01) Glasgow, Scotland, Dr Aristides (Aris) Moustakas http://bit.ly/2DSV4Zu 4. April 8th V 12th 2019 MACHINE LEARNING (MLUR01) Glasgow, Scotland, Dr Aristides (Aris) Moustakas http://bit.ly/2vbg8nR 5. April 15th V 19th 2019 INTRODUCTION TO PYTHON FOR BIOLOGISTS (IPYB06) Athens, GREECE,, Dr. Martin Jones http://bit.ly/2T7hDNQ 6. April 22nd V 26th 2019 GIS USING R (GISR) Glasgow, Scotland, Dr Luca Nelli http://bit.ly/2XWxTF5 7. April 29th V May 3rd 2019 MULTIVARIATE ANALYSIS OF ECOLOGICAL COMMUNITIES IN R WITH THE VEGAN PACKAGE (VGNR02) Orford Musique, Quebec, Canada, Dr. Guillaume Blanchet http://bit.ly/2T7zYui 8. May 6th V 10th 2019 AN EXPLORATION OF R FOR PSYCHOLOGISTS: FROM DATA HANDLING TO MULTILEVEL MODELLING (XPLR01) Myuna Bay, AUSTRALIA, Dr. Sean Murphy http://bit.ly/2XZjzeT 9. May 20th V 24th 2019 MODEL BASE MULTIVARIATE ANALYSIS OF ABUNDANCE DATA USING R (MBMV03) Myuna Bay, AUSTRALIA, Prof. David Warton http://bit.ly/2PtZ74y 10. May 20th V 24th 2019 MACHINE LEARNING (MLUR02) Myuna Bay, AUSTRALIA, Dr Aristides (Aris) Moustakas http://bit.ly/2YeMAnl 11. June 10th V 14th 2019 STABLE ISOTOPE MIXING MODELS USING SIAR, SIBER AND MIXSIAR (SIMM04) Glasgow, Scotland, Dr. Andrew Parnell, Dr. Andrew Jackson http://bit.ly/2FComxt 12. June 17th V 21st 2019 SPATIAL MODELLING AND ANALYSIS OF ADAPTIVE GENOMIC VARIATION (SPGN01) Glasgow, Dr. Matt Fitzpatrick http://bit.ly/2r0NmEO 13. June 17th V 21st 2019 INTRODUCTION TO PYTHON FOR BIOLOGISTS (IPYB06) Glasgow, Scotland, Dr. Martin Jones http://bit.ly/2PwTen2 14. June 24th V 28th 2019 MICROBIOME DATA ANALYSIS USING QIIME2 (MBQM01) Glasgow, Scotland, Dr. Yoshiki Vazquez Baeza, Dr. Antonio Gonzalez Pena http://bit.ly/2XZkiwD 15. June 24th V 28th 2019 ADVANCED PYTHON FOR BIOLOGISTS (APYB03) Glasgow, Scotland, Dr. Martin Jones http://bit.ly/2RnfnBF 16. July 1st V 5th 2019 BIOACOUSTICS FOR ECOLOGISTS: HARDWARE, SURVEY DESIGN AND DATA ANALYSIS (BIAC01) Glasgow, Scotland, Dr. Paul Howden-Leach http://bit.ly/2v77qHk 17. July 1st V 5th 2019 DATA VISUALISATION AND MANIPULATION USING PYTHON (DVMP01) Glasgow, Scotland, Dr. Martin Jones http://bit.ly/2xgr5YW 18. July 8th V 12th 2019 INTRODUCTION TO BAYESIAN HIERARCHICAL MODELLING USING R (IBHM03) Glasgow, Scotland, Dr. Andrew Parnell http://bit.ly/2T6Urzk 19. July 29th V August 2nd 2019 INTRODUCTION TO SPATIAL ANALYSIS OF ECOLOGICAL DATA USING R (ISPE01) Glasgow, Scotland, Dr. Jakub Nowosad http://bit.ly/2QrJACO 20. September 2nd V 6th 2019 APPLIED METHODS FOR ANALYSING CAPTURE-RECAPTURE (MARK-RECAPTURE) DATA USING SPATIALLY EXPLICIT AND NON-SPATIAL TECHNIQUES (MARK01) Glasgow, Scotland, Dr. Joanne Potts, Dr. David Borchers http://bit.ly/2T4E4Dp 21. September 16th V 20th 2019 R PACKAGE DESIGN AND DEVELOPMENT AND REPRODUCIBLE DATA SCIENCE FOR BIOLOGISTS (RPKG01) Glasgow, Scotland, Dr. Cory Merow, Dr. Andy Rominger http://bit.ly/2r0gxI5 22. September 30th V October 4th 2019 GEOMETRIC MORPHOMETRICS USING R (GMMR02) Glasgow, Scotland, Prof. Dean Adams, Prof. Michael Collyer, Dr. Antigoni Kaliontzopoulou http://bit.ly/2Rr2mqX 23. October 7th V 11th 2019 GENERAL ADDITIVE MODELS (GAM) AND MIXED MODELS (GAMM) (GAMM01) Glasgow, Scotland, Dr Aristides (Aris) Moustakas http://bit.ly/2T3yP76 24. October 7th V 11th 2019 CONSERVATION PLANNING USING PRIORITIZR : FROM THEORY TO PRACTICE (PRTZ01) Athens, GREECE, Dr Richard Schuster and Nina Morell http://bit.ly/2PxJPvC 25. October 21st V 25th 2019 A COMPLETE GUIDE TO MIXED MODELS (INCLUDING TEMPORAL AND SPATIAL AUTOCORRELATION) (MMTS01) Athens, GREECE, Dr Aristides (Aris) Moustakas http://bit.ly/2Rnzj7p 26. November 11th V 15th 2019 APPLIED BAYESIAN MODELLING FOR ECOLOGISTS AND EPIDEMIOLOGISTS (ABME05) Glasgow, Scotland, Dr Matt Denwood, Emma Howard http://bit.ly/2Ybtj5Z 27. November 18th V 22nd 2019 INTRODUCTION TO STRUCTURED POPULATION MODELS AND DEMOGRAPHIC DISTRIBUTION MODELS (IIPM01) Athens, GREECE, Dr Cory Merow http://bit.ly/2XZjF6f 28. November 25th V 29th 2019 ADVANCED RANGE, NICHE, AND DISTRIBUTION MODELING (ASDM01) Athens, GREECE, Dr Cory Merow http://bit.ly/2T8lnip via Gmail

#EvolDir

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todayclassical · 7 years

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June 18 in Music History

1466 Birth of early music printer Ottaviano de Petrucci in Italy.

1677 Birth of Italian opera composer Antonio Maria Bononcini in Modena.

1723 Birth of composer Giuseppe Scarlotti.

1726 Death of French composer Michel-Richard de Lalande in Versailles.

1744 Birth of composer Augustin Holler.

1757 Birth of Austrian piano manufacturer and composer Ignaz Joseph Pleyel.

1780 Birth of composer Michael Henkel.

1799 Death of Mozart's German music publisher Johann André in Offenbach.

1803 FP of Méhul/Boieldieu/Kreutzer/Nicolo: "Le Baiser et la quittance, ou Une Aventure de garnison" Paris.

1807 FP of Gyrowetz's "Die Junggesellen-Wirtschaft" Vienna.

1816 FP of Boieldieu/Herold's "Charles de France" Paris.

1820 Birth of composer Martin Andreas Udbye.

1821 FP of C. M. Von Weber's opera Der Freischutz at the Königliches Schauspielhaus, in Berlin.

1822 Birth of composer Henry David Leslie.

1831 FP of Donizetti's "La Romanziera e l'uomo nero" Opera buffa, Naples.

1837 Felix Mendelssohn completes his String Quartet in e, Op. 44, no. 2, while on his honeymoon in Freiburg, Germany.

1848 Birth of Belgian baritone Jacques Bouhy.

1850 Birth of Austrian-German composer Richard Heuberger in Graz.

1872 Birth of English pianist Katharine Goodson.

1876 Birth of French soprano Marcelle Demougeot in Dijon.

1880 Birth of Mexican composer Jose Pomer in Mexico City.

1887 Birth of American soprano Blanche Yurka in St. Paul, MN.

1887 Birth of soprano Kamila Ungrova in Kourim.

1889 Birth of Italian tenor Ismaele Voltolini in Mantua.

1891 FP of Bruneau's "Le Rêve" Paris.

1892 Birth of German pianist Edward Steuermann.

1896 Birth of Australian composer and organist Sir George Thalben-Ball.

1903 Birth of American soprano Jeanette MacDonald.

1904 Birth of French composer and conductor Manuel Rosenthal in Paris.

1905 Birth of Estonian-Swedish composer Eduard Tubin in Kallaste.

1907 Alexander Glazunov receives Mus.D. degree from Oxford University.

1915 Birth of French composer Victor Legley in Hazebrouck.

1917 Birth of composer Akhmet Jevdet Ismail Hajiyev.

1923 Birth of American ethnic music composer Elizabeth Waldo.

1927 Birth of Hungarian tenor Robert Ilosfalvy in Hódmezoevasárhély.

1927 Birth of composer Simeon Pironkov.

1933 Birth of Australian composer Colin Brumby in Melbourne.

1934 Birth of composer Pavle Dešpalj.

1941 Birth of Dutch conductor Hans Vonk in Amsterdam.

1942 Birth of British singer and composer Sir Paul McCartney.

1943 Birth of Hungarian soprano Eva Marton.

1944 Birth of American computer composer Paul Lansky in NYC.

1945 Birth of English horn player and conductor Anthony Halstead.

1947 Birth of composer Douglas Young.

1948 Birth of Welch baritone Arwel Huw Morgan in Neath S. Wales.

1950 Birth of Polish-American composer Jan Radzynski in Warsaw, Poland.

1950 Birth of American composer Frank Ferko in Barberton, OH.

1952 Death of baritone Heinrich Schlushnus.

1953 Birth of English pianist Peter Donohoe.

1955 Death of Swiss composer Willy Burkhard in Zürich.

1955 FP of Pierre Boulez`cantata Le Marteau sans Maitre in Baden-Baden.

1957 Birth of American composer Rand Steiger in NYC.

1957 Death of tenor Georgi Nelepp.

1958 FP of B. Britten's opera Noye's Fludde at Orford Church, Aldeburgh.

1962 FP of Halffter's Oratio 1st stage perf., la Scala.

1962 Death of Swiss composer and conductor Volkmar Andreae in Zurich.

1962 FP of Manuel de Falla`s opera Atlantida in Milan.

1963 Death of Dutch tenor Hans Kaart.

1971 Death of baritone Heinrich Nillius.

1977 FP of Davies' "The Martyrdom of St. Magnus" chamber opera, Kirkwall.

1978 Death of Brazilian baritone Lourival Braga.

1980 FP of V. Persichetti's Three Toccatinas for Piano. Performed by contestants in the International Piano Festival and Competition at the University of Maryland, College Park, MD.

1982 FP in USAmerica, Stage Premier, Verdi: Il Corsaro in San Diego, CA.

1992 FP of Anthony Davis' opera Tania at the American Music Theater Festival in Philadelphia, PA.

1994 Death of soprano Rosemare Broncato.

#classicalmusic #musichistory #todayclassical #today in music history #onthisday

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mindovermatter311 · 5 years

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IQ「Resistance」: 英ネオプログレの核、2019年最新作。再終結したオリジナルメンバーたちが新たに奏でるヘヴィプログレ！

こんにちは、ギタリストの関口です。

今日はIQの最新アルバムをご紹介していきます！

Resistance / IQ

Resistance

IQはイギリスのプログレッシブ・ロックバンド。

ネオプログレ界のMatter of Standard

1980年代初頭に勃興したネオプログレッシブ・ロックバンドとしてMarillionと共にイギリスを代表する存在となったIQは、1982年にボーカルPeter Nicholls、ギターMike Holmes、キーボードMartin Orford、ドラマーPaul Cook、ベースTim Esauの5人によって結成されます。

キーボディストのマーティンが主に舵を取りGenesisやYesと言った70年代の香りをほのかに残しながらメロディアスに展開していく新たなプログレッシブ・ロックの世界を体現していくことに成功します。

そんなマーティンは2008年に音楽…

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#ネオプログレ #英プログレ #IQ

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laquimeradegupta · 6 years

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ENCONTRAR LO INESPERADO DONDE NO TE LO ESPERAS. MI PROPIO CASO DE SERENDIPIA: Cómo descubrir una especie en un tarro de judías

Aquí podéis leer un ensayo con dos partes claramente diferenciadas: en la primera se habla sobre el concepto de serendipia y algunos famosos ejemplos (uno de ellos muy biológico), mientras que en la segunda parte se habla de cómo se puede descubrir una nueva especie en el lugar menos esperado

Serendipia. Un término muy extendido y que casi todo el mundo conoce y, no obstante, he decidido hacer una entrada del blog sobre este término ¿Está justificado? Bueno, veremos que hablar de serendipia no es más que una excusa para contaros mi breve, pero intensa, experiencia personal con la casualidad. Serendipia es una palabra de nuevo cuño, por tanto un neologismo (y que, por tanto, no proviene de ningún idioma antiguo o vernáculo), creado por el cuarto conde de Orford, Horace Walpole, un político e intelectual inglés del siglo XVIII, conocido por crear el género literario del terror gótico con su obra “El Castillo de Otranto”. Walpole en 1754, observando un cuadro (actualmente perdido) de Giorgio Vasari, que hacía referencia al cuento tradicional Persa “Los tres príncipes de Serendip” –según contaba en una carta a su amigo Horace Mann– se dio cuenta de su propia “suerte” al descubrir lo que el cuadro encerraba: los tres príncipes de Serendip solucionaban sus problemas con carambolas y casualidades imposibles y este adjetivo, a saber, personas que solucionan sus problemas sin buscarlo, no tenía homólogo en inglés. Ocurrió entonces lo lógico: denominó serendipity a esta característica. Serendip era el antiguo nombre de Sri Lanka o Ceilán, una gran Isla situada en la costa occidental de la India y la palabra deriva del sánscrito “Simhaladvīpah” pronunciado en árabe Sarandib. Walpole había descubierto por casualidad que un lugar muy lejano de Inglaterra, con tres príncipes agraciados, podía describir su propio hallazgo: serendipia.

Pero, el lugar en el que se ha hecho famoso este concepto, a lo largo del siglo XX, es la ciencia. La más conocida de todas las serendipias fue la de Alexander Fleming, que dejó una placa petri con cultivos bacterianos destapada y, tras unos días de cultivo a la temperatura adecuada, creció en ella un hermoso hongo que, para sorpresa del propio Fleming, había creado un halo alrededor suyo donde el crecimiento de la bacteria era nulo. No crecían bacterias. Había nacido la era de los antibióticos con el descubrimiento de la penicilina, producida por ese maravilloso hongo verde-azulado del género Aspergillus. Quizá esta sea una de las más importantes de la historia de la ciencia pero ni mucho menos la única. Otro gran descubrimiento fortuito relacionado con nuestra salud fueron los rayos X. A finales del siglo XIX Wilhelm Conrad Rötgen se encontraba estudiando la extraña fluorescencia violeta que emitían los llamados rayos catódicos: corrientes de electrones que se producían en tubos que solo contenían el gas de interés popularizados (pero no fue el inventor) para la investigación por el físico británico William Crookes; tubos llamados desde entonces tubos de Crookes o de rayos catódicos. Algunos investigadores que trabajaron con ellos se dieron cuenta que producía imágenes borrosas cuando los tubos se encontraban cerca de placas fotográficas (placas de vidrio con soluciones sensibles a la luz la más antigua de las cuales es el colodión una solución a base de sulfato de hierro amoniacal). Rötgen no estaba estudiando nada nuevo, siemplemente estaba ampliando los conocimientos sobre el comportamiento de los rayos catódicos en tubos con gases muy rarificados (a muy bajas presiones) y, para ello, estudió si esa fluorescencia era capaz de atravesar un cartón oscuro que envolvía el tubo de rayos catódicos ¿Qué ocurrió? El día 8 de noviembre de 1895 Rötgen vio algo extraño. Había diseñado una placa de papel impregnada en cianuro de bario y platino porque sospechaba que alguna radiación podía escapar al cartón negro, pero lo que no esperaba es que esta radiación produjera, también, fluorescencia. Así lo describió el mismo:

“Cuando se deja pasar la descarga de una bobina de Ruhmkorff [...]o cualquier otro tubo parecido [como el de Crookes], cubierto con una camisa ceñida de cartón negro y fino, y en la habitación totalmente a oscuras se deja una placa de papel previamente recubierta de una capa de cianuro de bario y platino, ésta se ilumina cada vez que se produce una descarga, independientemente de que la superficie recubierta esté apuntando o no hacia el tubo. Dicha fluorescencia se produce hasta 2 metros de distancia del aparato. Es fácil convencerse de que la fluorescencia proviene del aparato de descarga eléctrica y no de cualquier otra parte de la línea.” (2)

Como vemos, todavía habla de fluorescencia, así que no esperaba hallar un nuevo tipo de radiación. Pero eso fue lo que ocurrió y acabó recibiendo el Premio Nobel por ello en 1905:

“Durante los experimentos posteriores, descubrió que objetos de diferentes grosores interpuestos en la trayectoria de los rayos mostraban una transparencia variable cuando se registraban en una placa fotográfica. Cuando inmovilizó por unos momentos la mano de su esposa en el camino de los rayos sobre una placa fotográfica, observó después del desarrollo de la placa una imagen de la mano de su esposa que mostraba las sombras arrojadas por los huesos de su mano y la de un anillo que llevaba puesto, rodeado por la penumbra de la carne, que era más permeable a los rayos y por lo tanto arrojaba una sombra más tenue. Esta fue la primera "röntgenogram" [radiografía] jamás tomada. En otros experimentos, Röntgen demostró que los nuevos rayos se producen por el impacto de los rayos catódicos en un objeto material. Debido a que su naturaleza era desconocida, les dio el nombre de rayos X. Más tarde, Max von Laue y sus alumnos demostraron que son de la misma naturaleza electromagnética que la luz, pero difieren de ella solo en la frecuencia más alta de su vibración. (3)”

Hay muchos ejemplos de serendipia en la ciencia y, antes de empezar con mi propia historia, me gustaría comentar el caso de Osamu Shimomura, un químico orgánico y biólogo marino que, junto a al estadounidenses Martin Chalfie (uno de los primeros en usar el descubrimiento de Shimomura) y Roger Y. Tsien, de origen chino (y que modificó y amplió el descubrimiento), recibieron el Premio Nobel de química en 2008. ¿Qué descubrimiento realizó Shomomura? Con su formación de químico, consiguió aislar y purificar dos proteínas que emitían fluorescencia excitadas a una determinada longitud de onda y que las presentaban dos organismos marinos que cobijaban a bacterias simbiontes, responsables últimas de la producción de dichas proteínas: la luciferina del copépodo Cypridina hilgendorfii y la proteína verde fluorescente del hidrozoo Aequorea aequorea. En su primera etapa como investigador consiguió aislar la luciferina tras meses de duro trabajo de laboratorio. Como él mismo explica:

“Intenté cristalizar la luciferina purificada, pero todos mis esfuerzos terminaron en precipitados amorfos, y cualquier luciferina sobrante se volvió inútil por la oxidación a la mañana siguiente. Entonces tuve que repetir la extracción y purificación una y otra vez. Trabajé muy duro e intenté todos los métodos de cristalización que pude pensar, sin éxito. Diez meses más tarde, sin embargo, finalmente encontré que la luciferina se podía cristalizar en un solvente altamente inusual. El solvente que encontré fue una alta concentración de ácido clorhídrico. Utilizando la luciferina cristalizada, pudimos determinar las estructuras químicas de la luciferina y sus productos de oxidación” (4).

Esto fue importante porque, esta perseverancia, y el hecho de encontrar una solución improbable aunque lógica; una solución que ya había demostrado ser válida le preparó ara su siguiente batalla.Frank Johnson, de Princeton, invitó a Shomomura a su laboratorio para servirse de sus conocimientos en química orgánica. Al poco de llegar Johnson informó a todo el equipo que esta interesado en comenzar a estudiar la bioluminiscencia de la medusa Aequorea aequorea. Como explica Shomomura: “En ese momento, era una creencia común pensar que la luz de todos los organismos bioluminiscentes se producía por la reacción de la luciferina-luciferasa”. Reacción que, como hemos visto, el ayudó a conocer al cristalizar el enzima implicado.

“tratamos de extraer luciferina y luciferasa de los anillos de la medusa. Probamos todos los métodos que pudimos pensar, pero todos nuestros esfuerzos fracasaron. Después de unos pocos días de trabajo, nos quedamos sin ideas. Estaba convencido de que la causa de nuestro fracaso fue la hipótesis luciferina-luciferasa que dominaba nuestras mentes. Le sugerí al Dr. Johnson que nos olvidemos de la idea de extraer luciferina y luciferasa y, en cambio, tratar de extraer una sustancia luminiscente, cualquiera que sea. Sin embargo, no pude convencerlo. Debido al desacuerdo sobre el método experimental, comencé a trabajar solo en un lado de una mesa, mientras que, en el otro lado, el Dr. Johnson y su asistente continuaron sus esfuerzos para extraer luciferina. Fue una situación incómoda e incómoda” (4).

Algo verdaderamente lamentable ¿Por qué no llegaron a ponerse de acuerdo? ¿Estaría implicado el sistema jerárquico que suele darse en los departamentos y centros de investigación en la producción de semejante situación? La cabezonería y el empecinamiento son con la razón. La razón todo el mundo cree tenerla. La cabezonería y el empecinamiento todo el mundo dice no tenerlo. Pero los tres están igualitariamente repartidos por toda la población. Así se produjo la serendipia. Un trabajador del conocimiento que es apartado del trabajo principal y casi situado en el ostracismo comienza a pensar sobre lo que sabe y lo que no. Se cuestiona su conocimiento. Se pregunta si realmente están extrayendo luciferina y, sobre todo, se basa en la lógica. La historia sobre cómo llegó a conseguir el método para extraer la sustancia bioluminiscente de estos hidrozoos [y sus bacterias simbióntes] es maravillosa y no me veo capaz de sustituir a la prosa original de Shomomura [traducida, eso sí]. Así describe el proceso que le llevó al descubrimiento:

“Dado que la emisión de luz significa consumo (pérdida) de sustancia activa bioluminiscente, la extracción de éstas [...] debe realizarse en condiciones que inhiban reversiblemente la reacción de luminiscencia. Por lo tanto, traté de inhibir reversiblemente la luminiscencia con varios tipos de inhibidores de enzimas y proteínas. Lo intenté muy duro, pero nada funcionó. Pasé los siguientes días [...] tratando de descubrir lo que faltaba en mis experimentos y en mi pensamiento. Pensé día y noche. A menudo cogía una barca de remos en el medio de la bahía [de Friday Harbor, llena a rebosar de Aequorea aequorea y donde si situó finalmente el laboratorio de Johnson en 1961] para evitar la interferencia de la gente. Una tarde, una idea repentinamente me golpeó estando en la barca. Fue una idea muy simple: "La reacción de luminiscencia probablemente implica una proteína. De ser así, la luminiscencia podría inhibirse de forma reversible a un determinado pH". Inmediatamente volví al laboratorio y probé la luminiscencia de los órganos livianos [órganos donde viven las bacterias simbiontes de Aequoria productoras de la luminiscencia] a varios valores de pH. Observé claramente la luminiscencia a pH 7, 6 y 5, pero no a pH 4. Traté los órganos livianos en un tampón de pH 4 y luego filtré la mezcla. El filtrado, libre de células, estaba casi oscuro, pero recuperó la luminiscencia cuando lo neutralicé con bicarbonato de sodio. El experimento demostró que podía extraer la sustancia luminiscente, al menos en principio. Pero una gran sorpresa vino después: cuando arrojé el extracto por el fregadero, el interior del fregadero se iluminó con un destello azul brillante. El desagüe de uno de los acuarios del laboratorio fluía hacia el fregadero, así que descubrí que el agua de mar causó la luminiscencia. Debido a que se conoce la composición del agua de mar, descubrí fácilmente que los iones de Ca2+ activaban la luminiscencia. El descubrimiento de Ca2+ como activador sugirió que el material de luminiscencia podría extraerse utilizando el conocido quelante de calcio EDTA” (4).

Figura ilustrativa de una de las colonias de Oswaldella, en este caso, Oswaldella terranovae. Los pólipos defensivos se encuentran en unas pequeñas protuberancias dentro de casa internodo. También por detrás de los pólipos hidrantes. Los pólipos reproductores no son visibles

Pues bien, también puedo hablar en primera persona cuando nos referimos a serendipias. Nos situamos temporalmente a principios de 2017. La persona con la que llevo trabajando desde 2012, Álvaro Luis Peña Cantero, y yo, decidimos realizar una actualización y revisión de todo un género de hidrozoos antárticos. Quizá algo rutinario para una persona que lleva más de veinte años trabajando con hidrozoos; quizá algo árido para una persona que empieza a adentrarse en el mundo de la investigación. Al igual que estáis pensando muchos al llegar a estas líneas, pensé en huir como un zorro pillado en un gallinero. “¿Bichos del hielo a mi? Paparruchas”, me dije a mi mismo, pero hubieron dos cosas que me reengancharon enseguida (bueno, en realidad fueron tres, pero la tercera tiene que ver con requisitos académicos para finalizar un programa académico así que, no cuenta). La primera es que, la historia del descubrimiento y descripción del género Oswaldella es una de esas historias de la ciencia molonas. No de esas donde todo acaba bien, si no donde hay acusaciones, platos por los aires y malos humos. “Buena magra”. La segunda es que resulta que los hidrozoos juegan un papel vital en uno de los ecosistemas más grandes del planeta: la plataforma continental de la Antártida. ¡Y el género Oswaldella es uno de los más diversos de toda al Antártida! Vayamos por partes.

Para hacernos una pequeña idea de la importancia de estos organismos hay que pensar en ellos como los equivalentes marinos de los grandes herbívoros terrestres. ¿Qué ocurre con los pastos cuando no son pastados por los herbívoros? Las especies de más porte y/o con una mayor rapidez reproductiva, como por ejemplo las gramíneas, dominan, lo ocupan todo y la comunidad se simplifica. Este efecto (que el ramoneo de los herbívoros contribuye a mantener una elevada diversidad herbácea en los prados) ya fue observado por Charles Darwin. Así, los hidrozoos, junto con el conjunto de animales, que constituyen un todo funcional en los ecosistemas acuáticos, y que englobamos bajo el concepto trófico de “filtradores”, mantienen a raya las grandes explosiones poblacionales de algas, también llamadas blooms y, por tanto, evitan la simplificación de las comunidades fitoplanctónicas. Este fenómeno fue estudiado por C. B. Officer y sus colaboradores (5) en poblaciones de bivalvos y demostraron que éstos son esenciales para evitar los blooms.

Pero, ¿Es esto cierto también para el caso de los hidrozoos antárticos? Normalmente, las plataformas continentales no van más allá de los 500m de profundidad, con largos tramos de solo 100-200m. Este suele ser el hogar habitual de los hidrozoos en el mundo. Pero, en la Antártida, el peso del casquete polar sobre la masa continental hace que la plataforma se sitúa a unos increíbles 800-1000m de profundidad. Aquí, a primera vista, parece mucho más difícil la conexión rápida entre fitopláncton y “herbívoros”. Hay un grupo de investigación del Institut de Ciències del Mar (CSIC) en Barcelona que está trabajando sobre este asunto y han descubierto que los hidrozoos Antárticos juegan un papel importante. C. Orejas Saco del Valle, uno de los componentes de este grupo, ha realizado varios trabajos en esta línea. Concretamente, en uno de ellos, afirma:

“El principal papel de los suspensívoros antárticos parece estar relacionado con el reciclaje eficiente de la producción de la columna de agua, que solo se asimila parcialmente durante el hundimiento de las partículas de zooplancton i otros consumidores secundarios. […] La información disponible, junto con nuestros datos preliminares, nos permite hipotetizar que los suspensívoros bentónicos pueden alimentarse de plancton de muy pequeño tamaño y partículas resuspendidas durante el invierno antártico, al menos, para compensar sus costes metabólicos, o para continuar su reproducción mediante la inversión en el crecimiento durante el período de alimentación más favorable, es decir, el verano”(6).

En otras palabras, los hidrozoos antárticos, no operarían como “grandes herbívoros terres”, si no como los hongos del suelo, reciclando la materia orgánica en suspensión del agua, incorporándola a sus cuerpos y, con el tiempo, las corrientes oceánicas, y las surgencias de estas a la superficie, contribuir a un eficiente uso de la misma. En otro trabajo de este grupo de investigación (7), con otros expertos en hidrozoos como Josep-Maria Gili, consiguieron estimar la dieta de cuatro especies de hidrozoos antárticos, entre ellas una de las especies que trabajé, Oswaldella antartica. Los autores encontraron que la cavidad gastrovascular (cavidad análoga a nuestro estómago) de los especímenes de esta especie vacía en el 77% de los casos, y en el caso de poseer presas en su interior, el 94% de esas presas eran diatomeas. En otras especies estudiadas, como Tubularia ralphii, encontraron que, del 71% de individuos con presas, el 87% de estas eran copépodos. Resumiendo:

“explotan la comida disponible, tanto estacionalmente, como la dispuesta en parche o aquella de tamaño microscópico. La actividad y la producción del bentos antártico no se detiene durante el invierno, ni si quiera procesos de oogénesis. El papel de los suspensívoros en las comunidades bentónicas aún está lejos de estar claro, pero tiene que jugar un papel principal tanto en los procesos de acoplamiento pelago-bentónicos, como en el reciclaje de la materia orgánica” (7).

Una vez he atraído la atención de los lectores preocupados por la funcionalidad de los conocimientos adquiridos, describiré la serendipia que tuve hace poco más de un año y que ha culminado, recientemente, con la descripción de una nueva especie. El género que escogimos para revisar y actualizar fue el género Oswaldella, como he dicho. La historia de este género es larga. Los primeros individuos fueron hallados a principios del siglo XX y descritos por A. Billard (pero cambiados al nuevo género de Oswaldella por Stenkow en 1919 y con un artículo bastante duro contra Billard. Concretamente fue duro contra sus habilidades como zoólogo). Actualmente hay 27 especies descritas del género y, junto a la familia en la que está clasificada, Leptothecata, suponen el 20% de la diversidad de hidrozoos antárticos. ¡Casi nada! Además, es un género endémico de la región (salvo una especie, que ha sido capaz de colonizar algunas regiones del cono sudamericano).

Tras la publicación de la actualización y revisión del género de hidrozoos (8), nos dimos cuenta de que, tanto macroscópicamente, como microscópicamente, y con la información disponible de algunos estudios genéticos realizados, habían dos especies con una morfología demasiado similar como para ser consideradas distintas (9). Así que solicitamos el material tipo, depositado en el museo de historia natural de Londres. Estas dos especies eran Oswaldella terranovae y Oswaldella stepanjantsae (Fig. 1).

Figura 1. Oswaldella stepanjantsae (izq.) y Oswaldella terranovae (drcha.). Como vemos, en principio parecen bastante diferentes. Ramificación (A), gonoteca (I, izq. - h, drcha), hidrotecas (esa cubierta en forma de taza) de los internodos rectas, en un caso, y de apertura ovalada en O. terranovae, etc.

Al revisar la bibliografía nos dimos cuenta que algo no cuadraba. Cuando se revisaba la bibliografía del género, se veía que ambas especies eran similares. Los análisis genéticos confirmaban que estaban estrechamente emparentadas. Pero cuando relizamos los estudios al microscópio electrónico de barrido, presentaban mucha variación en sus componentes morfológicos. Era como si, cada material que analizásemos, se presentara ante nuestros ojos como una nueva especie. No era posible. En este género y, en general, en el resto de hidrozoos coloniales, no es raro observar variabilidad intraespecífica: las colonias crecen y no son iguales los individuos de la base de la colonia, más viejos, que los individuos del ápice. Pero, en este caso, los pólipos defensivos que se presentan en la base de cada ramificación, variaban entre 2 y 8, presentándose a veces sobre montículos, a veces protegidos, a veces desnudos. Y, en concreto este carácter en el género Oswaldella nos demasiado variable. Todo era tremendamente inusual.

¿Qué podría estar ocurriendo? Cuando nos llegó el material hicimos un estudio morfológico completo, al microscopio electrónico de barrido y al óptico. Al principio todo seguía siendo confuso porque la variabilidad no desaparecía hasta que, en uno de los repasos semanales de las fotos obtenidas y pensar sobre el problema que teníamos delante, la verdad se reveló como se reveló ante los tres reyes de Serendip. Llevamos cuatro muestras estudiadas al microscopio electrónico y, exceptuando la primera, había empezado a aparecer un patrón: dos pólipos defensivos en la base de la ramificación, una hidroteca alta y recta, un pólipo defensivo en la protuberancia del internodo con una protección realmente formidable y el que se encontraba por detrás de la hidroteca con un aro protector (Fig. 2). Todo era nuevo, pero era constante. Incluso se parecía mucho a una muestra muy escasa ya catalogada como algo no asignable a ninguna de las especies de Oswaldella conocidas, pero claramente del género. Observamos de nuevo el material al microscopio óptico y ahí estaba la respuesta: había dos colonias distintas dentro del mimos frasco que contenía el holotipo de la especie Oswaldella stepanjantsae. El holotipo es el material de referencia que se toma como referencia de una especie. Pues bien. Ahí habían dos especies. Y no solo eso. Pudimos comprobar que a lo largo de la colonia de Oswaldella stepanjantsae, el número de pólipos defensivos en la base de la ramificación variaba, pero no eran dos: eran 4 (a veces, 6) y se presentaban normalmente un par de ellos en montículos. Esto la hacía morfológicamente idéntica a Oswaldella terranovae. Además, las diferencias observadas en los demás aspectos fueron atribuibles a cambios en la posición de la cual se tomaba la muestra de la colonia. Es decir, estábamos ante la misma especie. Por el otro lado, el material “extraño” no correspondía con nada observado hasta ahora. Por lo visto, este material se había “colado” durante la clasificación e identificación del material de Oswaldella stepanjantsae con tan mala fortuna que, ni si queira, era material de otra especie ya conocida del género, o de otra especie de otro género, otra familia u otro orden. No, ¡era una especie nueva! Los holotipos se guardan en sencillo tarros de conservas así que, puedo decir con una sonrisa en la boca, que me encontré una nueva especie en un bote de judias (10).

Figura 2. Oswaldella occulta. El número de pólipos defensores, que en este caso son 2 (B) y la forma de los internodos (C-E), la hidroteca y los pólipos defensivos de los internodos son muy diferente

REFERENCIAS

Pérez-Tamayo, R. (1980). Serendipia: ensayos sobre ciencia, medicina y otros sueños. Siglo XXi.

CSIC – Cristalografía. 2. Los Rayos X. Thu. 16 Aug 2018,

Wilhelm Conrad Röntgen – Biographical. NobelPrize.org. Nobel Media AB 2018. Thu. 16 Aug 2018.

Shimomura, O. (2009). Discovery of green fluorescent protein (GFP)(Nobel Lecture). Angewandte Chemie International Edition, 48(31), 5590-5602.

Officer, C. B., Smayda, T. J., & Mann, R. (1982). Benthic filter feeding: a natural eutrophication control. Marine ecology progress series, 9(2), 203-210.

Orejas Saco del Valle, C. (2001). Role of benthic cnidarians in energy transfer processes in the Southern Ocean marine ecosystem (Antarctica). Berichte zur Polar-und Meeresforschung.

Orejas, C., Gili, J. M., Arntz, W. E., Ros, J., López, P. J., Teixidó, N., & Filipe, P. (2000). Benthic suspension feeders, key players in Antarctic marine ecosystems?. Contributions to Science, 2000, vol. 1, num. 3, p. 299-311.

Molinero, A. G., & Cantero, A. P. (2015). SEM study of species of Oswaldella Stechow, 1919 (Cnidaria, Hydrozoa, Kirchenpaueriidae), with an annotated checklist of the species of the genus. Zootaxa, 4052(4), 401-441.

Cantero, A. L. P., & Marques, A. C. (1999). Phylogenetic analysis of the Antarctic genus Oswaldella Stechow, 1919 (Hydrozoa, Leptomedusae, Kirchenpaueriidae). Contributions to Zoology, 68, 83-94.

Cantero, A. P., & Molinero, A. G. (2018). On several species of Oswaldella Stechow, 1919 (Cnidaria, Hydrozoa), including the description of a new species. Zootaxa, 4457(3), 397-414.

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